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[实验器材]
1.仪器
倒置显微镜,CO2培养箱,普通冰箱,超净工作台,低速冷冻离心机,显微数码摄影系统,IVC独立送风笼具。
2.材料与试剂
(2)无菌材料和试剂辅料镊,眼科镊,眼科手术剪,一次性培养皿,一次性lml注射器,6孔细胞培养板,15ml离心管,长丝滴管,l0ml刻度移液管,10%BS-RPMI1640培养液,无菌生理盐水,lmol/LHCl溶液。
(3)实验动物与细胞材料健康小鼠,SP2/0或S180。
[操作步骤]
1.细胞悬液准备
脊椎脱臼法处死小鼠,无菌选取生长良好(有光泽,淡红色)的瘤组织。在PBS中将瘤组织剪碎后用匀浆器研磨,经80-100目筛网过滤成单细胞悬液。
或收集对数生长期的培养瘤细胞。
收集细胞建议用PBS离心清洗1-2次。
计数并调整细胞浓度至107-108/ml,悬浮细胞使用无血清基础培养液或生理盐水,分装至1ml注射器,待用。
2.接种
常规消毒后,于接种部位(通常为背部皮下,或腋窝腹股沟皮下)用医用注射器皮下潜行一段后注入细胞悬液(0.1m1/部位,>106细胞)。
3.实体瘤生长观察
次日注意观察动物的健康情况。
4.实体瘤细胞收集
实体瘤生长时间一般需要8-15d。生长时间太短,获得的细胞数偏少。生长时间过长,实体瘤外部皮肤容易破损,影响肿瘤细胞质量。正常饲养或饲养时适当加强营养。
脊椎脱臼法处死小鼠。用消毒酒精浸泡小鼠5-10s,沥干,放置于超净工作台内无菌培养皿内,或放置于酒精棉球消毒的锡箔纸上。
无菌操作,剪开瘤体外皮肤,剥离实体瘤外组织,取出用含5-10倍抗生素的无菌PBS淋洗1-2次。用无菌眼科镊和眼科手术剪分离组织块,使成1mm3大小。处理后的组织块经胰蛋白酶消化,制备成单细胞悬液。及时计数以备使用。
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