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3.2.2.6测定条件
(1)液相色谱条件
色谱柱:Atlantis-C18,3.5um,150mm×2.1mm(内径)或相当者;柱温:40℃;进样量:30uL;流动相流动相A为0.1%甲酸水溶液,流动相B为0.1%甲酸乙腈溶液,流动相C为甲醇。梯度洗脱条件见表3-3。
(2)质谱条件
离子源:电喷雾离子源(ESI);扫描方式:正离子扫描;检测方式多反应监测(MRM);电喷雾电压(IS):5000V;辅助气(AUX)流速:7L/min;辅助气温度(TEM):550℃;聚焦电压(FP):150V;链霉素、双氢链霉素和卡那霉素的质谱参数见表3-4。
3.2.2.7分析条件的选择
(1)提取净化条件的选择
1)提取液的选择
氨基糖苷类药物具有较强的极性,羧酸型柱是弱阳离子交换柱,因此提取液的pH及缓冲液的浓度对结果尤为重要,本方法实验了用阴性蜂蜜样品,添加相同量的标准,按相同方法,用不同pH和不同浓度的磷酸盐溶液作为提取液做条件实验,实验数据见表3-15和表3-16。
表3-15 0.2mol/L磷酸盐缓冲溶液不同pH对结果的影响
表3-16 pH=8.0 不同磷酸盐缓冲溶液浓度对结果的影响
从表3-15和表3-16中看出,磷酸盐缓冲溶液的浓度为0.2mol/L、pH为8.0时,三种抗生素响应信号最高。
2)固相萃取柱的选择
本方法实验了Oasis HLB(60 mg,3 mL)、BAKERBOND SPE TM (500mg,3 mL)、SUPELCLEAN TM LC-SCX (500mg,3mL)、羧酸型(500mg,3mL)和BAKERBOND SPE TM C18 (500mg,3mL)单柱和双柱及不同搭配的净化效果和回收率。实验表明,Oasis HLB(60mg,3mL)串联羧酸型(500mg,3mL)双柱净化效果最好和回收率最高。因此,本方法选择这两个固相萃取柱为净化柱。
3.2.2.8线性范围和测定低限
链霉素、双氢链霉素和卡那霉素浓度为2.5ug/L、5.0ug/L、10.0ug/L、20.0ug/L、50.0ug/L和100.0μg/L,在规定的色谱质谱条件下,进样量30μL,进行测定,用溶液浓度对链霉素、双氢链霉素和卡那霉素定量离子对的响应值峰面积作图,得到的标准曲线是呈线性关系的,符合定量要求,链霉素相关系数为R=0.9991,其回归方程为Y=1340+1560X,线性范围范围为2.5~100.0ug/kg,双氢链霉素相关系数为R=0.9994,其回归方程为Y=4220+1010X,线性范围范围为2.5~100.0ug/kg,卡那霉素相关系数为R=0.9989,其回归方程为Y=7140+1620X,线性范围范围为2.5~100.0ug/kg,有良好的线性关系。链霉素、双氢链霉素和卡那霉素添加为5.0ug/kg时,其信噪比均大于10,获得较好的回收率及精密度,由此确定链霉素、双氢链霉素和卡那霉素的检测低限分别为5.0μg/kg。
相关链接:蜂蜜中链霉素、双氢链霉素和卡那霉素残留量的测定适用范围和方法原理
文章来源:《兽药多组分残留分析技术》
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